产品规格:5×50ml  5×100ml

保存条件:4℃避光保存，有效期 6 个月。

产品简介：

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年 使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。PAS 技术是 可检测不同种类的黏液物质(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法，但 PAS 技术却不能区别黏蛋白和糖原。若要准确鉴别黏液物质(如黏蛋白或糖原)，需加入糖原消化步骤。大多数情况下可用α–淀粉酶或麦芽淀粉酶来催化糖原的糖苷键水解，形成水溶性的双糖-麦芽糖，在应用 PAS技术之前将糖原从组织切片上除去。人类的唾液被认为是消化糖原的一种有效手段，但是出于安全以及缺乏标准唾液的考虑，不主张应用唾液。
糖原 D-PAS 染色液的特点在于糖原 PAS 染色之前经淀粉酶处理，糖原消化时需要两张相同的切片，脱蜡后一张切片用含有淀粉酶的适当缓冲液处理，另一张仅用缓冲液处理。然后两张切片均用 PAS 法染色，消化后染色消失表明存在糖原。
产品组成：

使用说明：
1. 两张相同切片，二甲苯脱蜡，梯度乙醇入水。2. 一张切片入 37℃淀粉酶溶液处理 1h。另一张不用淀粉酶溶液处理，入水中 1h 作为对照。
3. 流水冲洗两张切片各 5～10min。
4. 入过碘酸溶液，室温放置 5～8min，一般不宜超过 10min。
5. 自来水冲洗 1 次，再用蒸馏水浸洗 2 次。
6. 入 Schiff Reagent，置于室温阴暗处浸染 10～20min。
7. 自来水冲洗 10min。
8. 入 Mayer 苏木素染色液，染细胞核 1～2min。
9. (可选)酸性乙醇分化液分化 2～5s。
10. 自来水冲洗 10～15min，更换蒸馏水清洗使其返蓝。
11. 二甲苯透明，中性树胶封固。
染色结果：

注意事项：
1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。需使用一张阳性对照片验证酶的活性。
2. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时温度以 18～22℃ 。
3. 试剂(A)、试剂(B)、试剂(C)、应置于 4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前 提前取出恢复到在室温后，避光暗处使用。
4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5. 在过碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。
6. 冷冻切片染色时间尽量要短。
7. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

只适用于科研，不能用于临床诊断。严禁用于临床医疗及其他非科研用途！以实际收货产品说明书为准，网站说明书仅供参考。